SISTEMÁTICA Y TAXONOMÍA DE ALGAS Y HONGOS

Nuevos registros de Dothideomycetes (Ascomycota) no liquenizantes de los bosques Andino patagónicos de Argentina

 

Romina M. Sánchez & M. Virginia Bianchinotti

Centro de Recursos Naturales Renovables de la Zona Semiárida, Universidad Nacional del Sur, Camino La Carrindanga Km 7, B8000FWB Bahía Blanca, Buenos Aires, Argentina; rsanchez@uns.edu.ar (autor corresponsal).

 

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Resumen.

Tres especies de Dothideomycetes (Ascomycota) no liquenizantes halladas creciendo sobre corteza de árboles nativos de los bosques Andino Patagónicos de Argentina son aquí descriptas. Melanomma subdispersum y Mytilinidion tortile se registran por primera vez para América del Sur. El área de distribución de Mytilinidion andinense se amplía desde la provincia de Río Negro, donde fue hallada por primera vez, hacia la provincia de Chubut. Se brindan descripciones, datos de distribución geográfica, hábitat e ilustraciones para las tres especies.

Palabras clave. Argentina; Ascomycota; Dothideomycetes; Patagonia andina.

Abstract.

Three species of non lichenized Dothideomycetes (Ascomycota) found growing on bark of native trees from the Andean Patagonian forests of Argentina are described. Melanomma subdispersum and Mytilinidion tortile are reported for the first time in South America. The distribution area of Mytilinidion andinense is expanded from Río Negro province, where it was found the first time, to Chubut province. Descriptions, data on geographical distribution, habitat and illustrations are provided for the three species.

Keywords. Andean Patagonia; Argentina; Ascomycota; Dothideomycetes.

Original recibido el 16 de enero de 2015,
aceptado el 6 de noviembre de 2015
Editor Asociado: Mario Saparrat

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INTRODUCCIÓN

Los bosques Andino Patagónicos constituyen una formación geográfica única. Esta región se caracteriza por la presencia de numerosos lagos producto de los deshielos, clima templado frío y tupidos bosques mixtos donde predominan especies de Araucariaceae, Cupresaceae y Nothofagaceae nativas (Cabrera & Willink, 1980; Donoso, 1993). Estos bosques revisten importancia paisajística para la región y son un reservorio valioso de biodiversidad, entre otras cosas, debido a la presencia de representantes endémicos, como Austrocedrus chilensis (D. Don) Pic. Serm. & Bizzarri, Nothofagus antarctica (G. Forst.) Oerst., y N. pumilio (Poepp.& Endl.) Krasser, entre otros.
La micobiota asociada a las especies de Nothofagus Blume ha sido bien estudiada en Nueva Zelanda, contando actualmente con alrededor de 9600 registros fúngicos, entre los cuales más de 1600 son ascomicetes (New Zealand Fungal and Plant Disease Collection, 2015). En los bosques Andino Patagónicos, el estudio de los ascomicetes no liquenizantes ha contado con la investigación invaluable de Irma Gamundí especialmente en el grupo de los discomicetes (ver referencias completas en Gamundí & Romero, 1998; Gamundí, 2003; Gamundí et al., 2004). Sin embargo, la información sobre otros grupos, como numerosas familias de pirenomicetes y de loculoascomicetes s.l. es fragmentaria. Si bien Spegazzini desarrolló una intensa labor micológica en la zona (cfr. Farr, 1973) realizando un gran aporte para ambos grupos, sus últimas publicaciones datan del año 1926 y desde entonces sólo se han publicado algunos trabajos más, restringidos a algunas zonas del Parque Nacional Nahuel Huapi y Parque Nacional Tierra del Fuego (por ejemplo, Havrylenko, 1996; Messuti& Lorenzo, 1997; Lorenzo, 1999; Gamundí & Lorenzo, 2001; Lorenzo & Havrylenko, 2002; Messuti & Lorenzo, 2003; Romero & Carmarán, 2003; Lorenzo & Messuti, 2005; Messuti & Lorenzo, 2007). Recientemente, se ha iniciado el estudio de los loculoascomicetes y pirenomicetes de los bosques Andino Patagónicos contando con varios hallazgos: Acanthostigma patagonica R.M. Sánchez, A.N. Mill. & Bianchin. (Sánchez et al., 2012), A. minutum (Fuckel) Sacc. (Sánchez & Bianchinotti, 2010), Dothiorina tulasnei (Sacc.) Höhn. (Sánchez & Bianchinotti, 2007), Rebentischia massalongoi (Mont.) Sacc. (Bianchinotti & Sánchez, 2009), Rhynchomeliola lomatiae S. Lee & Joanne E. Taylor, R. usteriana (Speg.) Arx. & E. Müll. (Bianchinotti et al., 2012) y Tubeufia cerea (Berk. M.A. Curtis) Höhn. (Sánchez & Bianchinotti, 2010).
Como otro aporte al conocimiento de la biodiversidad de ascomicetes no liquenizantes de la Argentina se describen e ilustran especies fúngicas que crecen sobre corteza de Austrocedrus chilensis, Nothofagus antarctica y N. pumilio.

MATERIALES Y MÉTODOS

Área de estudio. Las especies fúngicas tratadas provienen de colecciones realizadas en tres sitios de la provincia del Chubut: 1) Parque Nacional Los Alerces, ubicado al sur del paralelo 42°32', en el límite internacional con Chile; 2) Área Natural Protegida Lago Baggilt, de tan solo 15 km², contigua al sur del parque Nacional Los Alerces y a 10 km de la frontera internacional; 3) aserradero Pelech Hnos. de la ciudad de Esquel, a partir de muestras tomadas de tocones de lenga provenientes del bosque Huemules.

Muestreo. Los muestreos se realizaron de forma no sistemática durante primavera, verano y otoño, entre los años 2006 y 2009, tomando varios trozos de corteza por árbol. El material se secó a temperatura ambiente, se guardó en bolsas de papel madera y se depositó en BBB "Bahía Blanca Biología" Herbario (Thiers, 2015). Los resultados aquí presentados se basan en el examen de muestras provenientes de 15 individuos de Austrocedrus chilensis, 12 de Nothofagus antarctica y 93 de N. pumilio.
Las observaciones a campo claro se hicieron en un microscopio óptico LEITZ SM LUX o en un equipo LEICA DM2000. Se obtuvieron fotomicrografías con una cámara fotográfica WILD SEMIPHOTOMAT MPS11 y con una cámara digital SAMSUNG NV10 adaptada al microscopio LEICA. Se utilizaron los medios de montaje tradicionales (Kirk et al., 2008) y rojo congo al 3% para la visualización estructuras específicas.

RESULTADOS Y DISCUSIÓN

DOTHIDEOMYCETES
PLEOSPORALES
MELANOMMATACEAE

Tradicionalmente la circunscripción de la familia Melanommataceae fue controversial. Barr (1990) ubicó en ella cinco géneros: Byssosphaeria Cooke, Keissleriella Höhn., Melanomma, Ostropella (Sacc.) Höhn. y Strickeria Körb.; posteriormente Lumbsch & Huhndorf (2007) aceptaron 18 géneros: Acrocordiopsis Borse & K.D. Hyde, Anomalemma Sivan., Astrosphaeriella Syd. & P. Syd., Asymmetricospora J. Fröhl. & K.D. Hyde, Bicrouania Kohlm. & Volkm.-Kohlm., Bimuria D. Hawksw., Chea & Sheridan, Byssosphaeria, Calyptronectria Speg., Caryosporella Kohlm., Javaria Boise, Karstenula Speg., Mamillisphaeria K.D. Hyde, S.W. Wong & E.B.G. Jones, Melanomma, Ohleria Fuckel, Ostropella, Pseudotrichia Kirschst., Trematosphaeria Fuckel y Xenolophium Syd.; pero cuestionando la ubicación de seis: Anomalemma, Astrosphaeriella, Bimuria, Caryoporella, Mamillisphaeria y Trematosphaeria; mientras que Kirk et al. (2008) incluyeron 21 géneros. Mugambi & Huhndorf (2009) establecieron por medio de una filogenia con datos moleculares el origen polifilético de la familia Melanommataceae, incluyeron tres géneros que previamente formaban parte de ella: Byssosphaeria, Melanomma y Pseudotrichia, rechazaron a dos de ellos, Ostropella y Xenolophium, e incorporaron en Melanommataceae a dos géneros, Bertiella (Sacc.) Sacc. & P. Syd. y Herpotrichia Fuckel, que pertenecían a otras familias, Teichosporaceae y Lophiostomataceae, respectivamente.

Melanomma Nitschke ex Fuckel

El género Melanomma se creó para incluir pequeños pirenomicetes con ascomas carbonáceos y esporas pardas o hialinas, raramente aseptadas, generalmente con 2-;3 septos. Saccardo (1878) lo enmendó para incluir sólo especies con esporas coloreadas, multiseptadas, aovadas u oblongas; pero finalmente amplió la descripción, adoptando definitivamente a M. pulvis-pyrius (Pers.) Fuckel como la especie tipo y transfirió a Melanomma las especies del género Sphaeria descriptas por De Notaris y por Karsten (Saccardo, 1883). Muchas especies fueron luego descriptas o transferidas a este género para acomodar diferentes taxa habitantes de la madera (Barr, 1990). Por otra parte, el último trabajo basado en el estudio de caracteres moleculares de especies de Melanomma reveló que el género, como otros loculoascomicetes, tiene un origen polifilético (Wang et al., 2007).
En América del Sur, se conocían hasta ahora 20 especies de Melanomma (Tabla 1). En la Argentina en particular se habían registraron trece, entre las cuales Romero (1998) halló la especie tipo, M. pulvis-pyrius, con su estado anamórfico sobre Eucalyptus viminalis Labill y las doce restantes fueron descriptas por Spegazzini (ver referencias en Tabla 1).

Tabla 1. Especies del género Melanomma previamente registradas en América del Sur.

Melanomma subdispersum (P. Karst) Berl. & Voglino, Saccardo, Syll. Fung., Addit I-IV: 148. 1886. Sphaeria subdispersa P. Karst., Hedwigia 23(4): 57. 1884. TIPO: Federación Rusa. Siberia occidental, Samarova, IV-1884, P. A. Karsten s.n. (holotipo NY, no visto). Helminthosporium longipilum Corda [como Helmisporium], Icon. Fung. (Prague) 1: 14. 1837. Nigrolentilocuslongipilus (Corda) R.F. Castañeda & Heredia, in Castañeda Ruiz, Heredia, Reyes, Arias & Decock, Cryptog. Mycol. 22(1): 15. 2001. Fig. 1.

Fig. 1. Melanomma subdispersum. A, ascomas. B, ascos teñidos con rojo congo. C, ascosporas. D, ascospora con células de ambos extremos germinando. E, conidio. F, conidióforo. Aap: anillo apical. A-D, de Bianchinotti 73 (BBB). E y F, de Bianchinotti & Sánchez 542 (BBB).

Ascomas periteciales, subperidérmicos, a veces dispuestos en forma lateral sobre el sustrato, dispersos o en grupos pequeños, globosos, color negro brillante, 245-625 µm de alto y 214-425 µm de diám. ( x = 405 × 308; n = 12); ostíolo circular papilado, inicialmente no visible, luego bien diferenciado en una papila en general subcéntrica, de 50-125 × 20-;75 µm ( x = 83,8 × 50,7; n = 10). Peridio de consistencia coriácea, biestratificado, de 25-41 µm de espesor ( x = 34), con una capa externa más gruesa en la parte superior del ascoma, color pardo oscuro, donde no se distinguen las células, y una capa interna formada por células cilíndricas de pared delgada, hialinas, dispuestas en textura angularis, de 8-13 × 3-4 µm. Pseudoparáfisis filiformes, ramificadas, septadas, hialinas, de 1 a 4 µm diám., formando una malla o red firme. Perífisis filiformes, hialinas, de 1 a 2 µm diám. Ascos bitunicados, cilíndricos, pedicelados, 8 esporados, con anillo apical no amiloide I^-;, que se tiñe positivamente con rojo Congo, de 61-125 × 10-13 µm (x = 94,1 × 11,9; n = 8). Ascosporas fusiformes a ovales, mayormente con 3 septos transversales pero algunas pueden tener hasta 5, constreñidas en el septo primario, de paredes lisas, con células centrales de color pardo rojizo y células distales hialinas, uniseriadas en el asco, a veces biseriadas en la zona basal, 18-26 × 6-10 µm ( x = 22,4 × 7,1; n = 74).

Anamorfo. Presente sobre la corteza. Conidióforos cilíndricos, rectos o curvos, tabicados, con crecimiento simpodial y cicatrices, de color pardo oscuro con la zona apical más clara, de 65-175 × 5-13 µm ( x = 108 × 6,7; n = 16). Células conidiógenas cilíndricas, de color pardo claro, de 4-13 µm de largo (n = 14) y cerca de 3 µm de diám. Conidios pardo claros a oscuros, ovales a elipsoidales, con 1 a 3 septos transversales, de 17-26 × 5-7 µm (x = 20,5 × 5,7; n = 16). No fue posible obtener la colonia del anamorfo en cultivo.

Distribución y hábitat. Alemania, Argentina, Austria, Canadá, Escocia, Finlandia, Gales, Hungría, Inglaterra, Irlanda, Polonia, Rusia. Saprótrofo sobre Betula alba L., Betula sp., Fagus sp., Nothofagus pumilio y Sorbus aucuparia L. (Karsten, 1884; Hughes, 1950; Farr & Rossman, 2015).

Observaciones. Los especímenes hallados sobre Nothofagus pumilio ("lenga") concuerdan plenamente con la descripción original de Sphaeria subdispersa por Karsten (1884), que fuera luego transferida a Melanomma (Berlese & Voglino, 1886: 148). La descripción detallada de ambos estados, teleomórfico y anamórfico, fue realizada por Hughes (1950) a partir de ejemplares coleccionados en Gran Bretaña. En el material argentino se observaron ascosporas germinando a partir de las células de los extremos. Este constituye el primer registro de la especie para América del Sur.
Teniendo en cuenta los cambios incorporados en el Código Internacional de Nomenclatura para Algas, Hongos y Plantas (McNeill et al., 2012), los hongos con ciclo de vida pleomórfico deben tener un único nombre científico. Por ello, si bien Helminthosporum longipilum Corda (1837), nombre del anamorfo, tiene prioridad sobre el nombre del teleomorfo, Melanomma subdispersum (P. Karst) Berl. & Voglino Saccardo (1886), por el Art. 57.2, si ambos nombres fueron ampliamente utilizados para un taxón, el nombre de un anamorfo que tiene prioridad no debe desplazar al nombre del teleomorfo más utilizado (en los casos anteriores al 1 de enero de 2013), hasta que una propuesta de rechazo del primero conforme a los Art. 56.1 ó 56.3 o una propuesta de conservación del segundo, conforme a los Art. 14.1 ó 14.13, haya sido presentada y rechazada. Por lo tanto, se mantiene el nombre M. subdispersum.

Material representativo examinado
ARGENTINA. Chubut. Depto. Futaleufú, Esquel, Aserradero Pelech Hnos., sobre tocones de Nothofagus pumilio, 8-V-2004, Bianchinotti 68, 73 (BBB); ídem, 3-XII-2005, Rajchenberg 12171 (BBB); camino al Lago Baggilt por Ruta Nac. 259 después de Trevelin, desvío a la izquierda 12 km, sobre corteza de Nothofagus pumilio, 15-V-2007, Bianchinotti & Sánchez 542 (BBB).
REINO UNIDO. Inglaterra. Norfolk County, Wheatfen Broad, sobre peridermis de Betula sp., 07-IV-1947, Ellis & Ellis 13466(c), 622389 (BPI). Surrey County, Ashtead Common, sobre peridermis de Betula sp., 29-II-1948, Hughes 25234(b), 622384 (BPI); sobre corteza de Betula sp., 2-III-1947, Hughes 12286(a), 622388 (BPI); Ranmore Common, sobre corteza y peridermis de Betula sp., 25-V-1947, Hughes 15525(a), 622385 (BPI); Mickleham, sobre peridermis de Betula sp., 26-V-1947, Hughes 15526(a), 622386 (BPI). Yorkshire County, Skelder Plantation, sobre Betula sp., 15-IX-1946, Hughes 6789(a), 622387 (BPI).

MYTILINIDIALES
MYTILINIDIACEAE

Los integrantes de esta familia, caracterizados por ascomas en forma de bivalvos de apertura longitudinal, fueron históricamente clasificados en Hysteriaceae. Esta familia fue transferida varias veces de orden (Nannfeldt, 1932; Arx & Müller, 1975) hasta que finalmente se creó el orden, Hysteriales, cercano a los Pleosporales (Miller, 1949). Si bien Duby (1862) sugirió la separación de los hongos histeriáceos en dos secciones, no fue hasta cien años después (Zogg, 1962) que se reconocieron dos familias: Hysteriaceae caracterizada por la presencia de ascomas histerioteciales de pared gruesa y Lophiaceae (Zogg, 1962) con ascomas de pared delgada. Luego Barr (1990) justificó la conservación del nombre Mytilinidaceae para la familia Lophiaceae. Recientemente, Schoch et al. (2007) comprobaron molecularmente que Hysteriaceae y Mytilinidaceae representan familias monofiléticas no relacionadas y pertenecientes a Pleosporomycetidae. Boehm et al. (2009a, 2009b) reconstruyeron la filogenia de ambas familias y establecieron el nuevo orden Mytilinidiales para acomodar a la familia Mytilinidiaceae. En esta última reconocen seis géneros Actidium Fr., Lophium Fr., Mytilinidion, Ostreola Darker, Quasiconcha M.E. Barr y Zoggium Lar. N. Vassiljeva; y transfieren Glyphium Nitschke ex F. Lehm. y Ostreichnion a Hysteriaceae.

Mytilinidion Duby

Las especies del género Mytilinidion se caracterizan por sus ascomas gregarios o solitarios, alargados con forma de concha marina y apertura longitudinal; superficie a menudo estriada longitudinalmente, peridio delgado, de consistencia carbonosa, compuesto por células pequeñas de paredes gruesas; ascos y hamatecio inmersos en una matriz de gel, ascosporas elipsoides, fusoides u oblongo fusoides, simétricas o asimétricas, multiseptadas, amarillentas a pardas. Estos hongos, llamados vulgarmente mitilinidáceos, poseen, a diferencia de los histeriáceos, un peridio prosenquimático delgado que encierra un hamatecio de pseudoparáfisis trabeculares delgadas, generalmente escasas o ausentes en la madurez, envueltas en una matriz de gel.

Mytilinidion andinense (Messuti & Lorenzo) E. Boehm, C.L. Schoch & Spatafora, Mycol. Res. 113(4): 470. 2009. Hysterium andinense Messuti & Lorenzo, Mycol. Res. 101(3): 303. 1997. TIPO: Argentina. Río Negro, Depto. Pilcaniyeu, Dina Huapi, 3-XII-1992, M. Havrylenko 33529 (holotipo BAFC, no visto). Fig. 2A-D.

Fig. 2. Mytilinidion andinense. A, ascomas. B, ascos. C, ascosporas. D, ascospora con 8 septos. Mytilinidion tortile. E, ascomas. F, ascoma abierto. G, ascosporas. H, asco. A-D, de Bianchinotti & Sánchez 229 (BBB). E-H, de Bianchinotti 100 (BBB).

Ascomas periteciales, superficiales, gregarios, con forma de bivalvo, obovoides en sección longitudinal, alargados, a veces curvos o sinuosos, asimétricos bilateralmente, color negro brillante, de 400-;1000 µm de alto, 740-;1740 µm de largo y 260-;700 µm de ancho ( x = 626,4 × 1146,2 × 445,4; n = 14); superficie estriada, con apertura apical longitudinal. Peridio de consistencia carbonosa, de 38-;44 µm de espesor en la parte lateral del ascoma y 63-;80 µm de espesor en la parte superior. Pseudoparáfisis filiformes, ramificadas, septadas, hialinas, de 1-;2 µm de diám. Ascos bitunicados, cilíndricos, pedicelados, 8 esporados, sin aparato apical, de 173-;250 × 16-;20 µm ( x = 215,8 × 18,3; n = 11). Ascosporas ovales a fusiformes, con (3-)5 a 7(-8) septos transversales, el septo primario constriñe a la ascospora, pared lisa, color ocre oscuro, uniseriadas en el asco, de 35-;62(90) × 10-;19 µm ( x = 49,2 × 13,2; n = 75).

Anamorfo. No se encontró.

Distribución y hábitat. Argentina. Saprótrofo sobre Austrocedrus chilensis.

Observaciones. El material examinado difiere del descripto por Messuti & Lorenzo (1997) por el mayor tamaño de los ascomas (400-;640 µm alto, 600-;1300 µm largo, 200-;450 µm ancho), la mayor longitud de los ascos (172-;198 µm), el mayor tamaño de las ascosporas (32-;44 × 10-;15 µm) y su disposición uniseriada en el asco. Estas diferencias pueden atribuirse a que el material aquí descripto está más maduro que el material tipo (Lorenzo, com. pers.). Esta especie fue registrada por primera y única vez en la provincia de Río Negro en Dina Huapi, sobre el mismo sustrato aquí mencionado. Con este nuevo registro se extiende su área de distribución hacia la provincia de Chubut.
Basándose en el estudio molecular de cultivos monospóricos obtenidos de material autenticado (i.e. identificado por el autor) de Hysterium andinense, Boehm et al. (2009b) transfirieron la especie al género Mytilinidion, constituyendo así el primer registro del género en América del Sur.

Material representativo examinado
ARGENTINA. Chubut. Depto. Futaleufú, Parque Nacional Los Alerces, 42º46'22,2"S, 71º43'50,94"O, 551 m s. m., sobre ramas de Austrocedrus chilensis, 24-X-2006, Bianchinotti & Sánchez 225, 228 y 229 (BBB).

Mytilinidion tortile (Schwein.) Sacc., [como ‘Mytilidion'], Syll. Fung. (Abellini) 2: 763. 1883. Hysterium tortile Schwien., Schriften Naturf. Ges. Leipzig 1: 50. 1822. TIPO: Estados Unidos de América. Newfield, New Jersey, IV-1888, J. B. Ellis = N. A. F. 2152 (MASS, no visto). Fig. 2E-H.

Ascomas periteciales, superficiales, dispersos o en pequeños grupos, obovoides, color negro brillante, de 160-;620 µm de alto, 300-;1984 µm de largo y 186-;620 µm de ancho ( x = 287,4 × 814,3 × 347,6; n = 43); superficie estriada horizontalmente, con apertura apical longitudinal en un surco. Peridio de consistencia carbonosa, de 32-;57 µm de espesor en la parte lateral del ascoma y 38-;68 µm de espesor en la parte superior. Pseudoparáfisis filiformes, ramificadas, anastomosadas, septadas, hialinas, de 1 µm de diám. Ascos bitunicados, cilíndricos, pedicelados, 8 esporados, sin aparato apical, de 71-;93 × 6-;9 µm ( x = 86,8 × 7,8; n = 10). Ascosporas oblongo fusiformes, asimétricas, la mitad superior de mayor tamaño, con 3 septos transversales, todos constriñendo la ascospora, pared lisa, color ocre oscuro, uniseriadas en el asco, de 11-;18 × 4-;6 µm ( x = 14,7 × 5,1; n = 41).

Anamorfo. No se encontró.

Distribución y hábitat. Alpes franceses, Alpes suizos, Argentina, España, Estados Unidos de América, Rusia. Saprótrofo sobre Abies pinsapo Boiss., Austrocedrus chilensis, Juniperus virginiana L., Larix decidua Mill., Larix sp., Nothofagus antarctica, Picea excelsa (Lamb.) Link, Picea sp., Pinus albicaulis Engelm, P. cembra L., P. contorta Douglas ex Loudon, P. ponderosa P. Lawson & C. Lawson, P. silvestris L., Pinus sp. y Pseudotsuga menziesii (Mirb.) Franco (Ellis & Everhart, 1892; Zogg, 1962; Farr & Rossman, 2015).

Observaciones. Los autores que describieron esta especie (Saccardo, 1883; Ellis & Everhart, 1892; Lohman, 1933; Barr, 1990) mencionan ascomas de menor tamaño (500-;1500 × 200-;500 µm) que los encontrados en Argentina sobre A. chilensis, pero el resto de los caracteres observados concuerda con la descripción del material tipo. Esta constituye la primera cita de Mytilinidion tortile para América del Sur.

Material representativo examinado
ARGENTINA. Chubut. Depto. Futaleufú, Parque Nacional Los Alerces, 42º51'47,16"S, 71º37'35,46"O, sobre corteza de Austrocedrus chilensis, 7-V-2004, Bianchinotti 15 (BBB); 43º13'S, 71º32'37,8"O, sobre Nothofagus antarctica, 11-V-2004, Bianchinotti 100 (BBB).

CONCLUSIONES

Como resultado del estudio de los hongos asociados a la corteza de Austrocedrus chilensis, Nothofagus antarctica, y N. pumilio, árboles endémicos de los bosques Andino Patagónicos (Argentina y Chile), se registran tres especies de Dothideomycetes, pertenecientes a las familias Melanommataceae y Mytilinidiaceae: Melanomma subdispersum, Mytilinidion andinense y M. tortile. Se registra Melanomma subdispersum por primera vez para América del Sur (Argentina), así también a Mytilinidion tortile previamente mencionada únicamente para el hemisferio norte. Además se amplía el área de distribución de Mytilinidion andinense desde la provincia de Río Negro hasta la provincia del Chubut.

AGRADECIMIENTOS

Agradecemos especialmente a las doctoras Andrea I. Romero y Amy Y. Rossman por su gran ayuda en el análisis nomenclatural de Melanomma subdispersum. A los curadores de los herbarios NY y BPI, por el préstamo de los materiales para su estudio. Al Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Tecnológicas (CONICET: PIP 5660 y PIP 80101000) y a la Universidad Nacional del Sur (UNS: PGI) por el financiamiento de la investigación.

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