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Acta bioquímica clínica latinoamericana

versión On-line ISSN 1851-6114

Acta bioquím. clín. latinoam. v.43 n.1 La Plata ene./mar. 2009

 

HEMORREOLOGÍA

Tratamiento de eritrocitos humanos con copolímeros sintéticos: optimización del tiempo de incubación

Treatment of human erythrocytes with synthetic copolymers: optimization of the incubation time

Virginia Danieli1 *,**, Alicia Beatriz Fontana2 *, Adriana Cecilia Alessi2 *, Patricia Gladis Foresto3 *,**, Juana Rosa Valverde4 *,**, Christian Grandfils5 ***, Bibiana Doris Riquelme6 *,**

1. Licenciada en Biotecnología
2. Bioquímica
3. Doctora de la Universidad Nacional de Rosario - Prof. Adj. Área Inmunohematología
4. Doctora de la Universidad Nacional de Rosario - Prof. Titular Área Inmunohematología
5. Doctor en Química
6. Doctora en Física - Prof. Adj. Área Física

* Facultad de Ciencias Bioquímicas y Farmacéuticas, Universidad Nacional de Rosario, Suipacha 535, 2000 Rosario, Argentina (e-mail:briquel@fbioyf.unr.edu.ar)
** Grupo de Óptica Aplicada a la Biología, Instituto de Física de Rosario (CONICET - UNR), Boulevard 27 de Febrero 210 bis, 2000 Rosario, Argentina (e-mail: riquelme@ifir.edu.ar)
*** Centro de Biomateriales de la Universidad de Lieja (Bélgica)

Resumen

Los copolímeros policatión-polietilenglicol Semo B86 y Semo B124 fueron desarrollados con fines terapéuticos, en particular, el enmascaramiento de sitios antigénicos de eritrocitos humanos para disminuir el riesgo de aloinmunización en transfusiones sanguíneas. El objetivo de este trabajo fue optimizar el protocolo de tratamiento de los eritrocitos humanos con estos dos copolímeros para mejorar su hemocompatibilidad. Para ello se estudió la influencia del tiempo de incubación de eritrocitos humanos con los dos copolímeros, analizándose las alteraciones producidas sobre la morfología y la capacidad de agregación eritrocitaria, utilizando técnicas de microscopía y análisis digital de imágenes. Se observó que los eritrocitos tratados con ambos copolímeros, si bien no sufrieron cambios en su morfología celular, presentaron alteraciones en la distribución del tamaño y en la estructura de sus agregados. En particular se observó un aumento del porcentaje de células individuales y una disminución del porcentaje de grandes agregados. Este efecto fue más significativo con el aumento del tiempo de incubación, siendo mayor para el Semo B86. Estos resultados permiten comprender mejor la interacción policatión/membrana y optimizar el protocolo de tratamiento de eritrocitos con estos compuestos, pudiéndose extender a otros copolímeros de estructuras similares con diferentes aplicaciones terapéuticas.

Palabras clave: Policatión; Polietilenglicol; Agregación eritrocitaria; Hemocompatibilidad; Biocompatibilidad; Análisis digital de imágenes

Summary

Polycation - polyethylenglycol copolymers (Semo B86 and Semo B124) were developed for therapeutic uses, especially for the masking of antigenic sites of human erythrocytes to decrease the risk of aloimmunization in blood transfusions. The aim of this work was to optimize the protocol for treating human erythrocytes using these two copolymers in order to improve their hemocompatibility. The influence of the incubation time of human erythrocytes with both copolymers and the alterations produced to the morphology and erythrocyte aggregation capacity were studied using microscopy techniques and digital image analysis. Erythrocytes treated with both copolymers showed no changes in their cellular morphology but alterations in the size distribution and structure of aggregates, which were revealed by an increase in the individual cell percentage and a decrease in the percentage of large aggregates. These effects became more marked as the incubation time increased and were greater for Semo B86. These results enable a better understanding of membrane-polycation interactions and the optimization of the protocol to treat erythrocytes using these compounds. This finding may also be applied to the study of copolymers of similar structure and different therapeutic uses.

Keywords: Polycation; Polyethylene glycol; Erythrocyte aggregation; Hemocompatibility; Biocompatibility; Digital image analysis

Introducción

En colaboración con el Centro de Biomateriales de la Universidad de Lieja (Bélgica) se desarrollaron policationes sintéticos de características específicas con fines terapéuticos, en particular, el enmascaramiento de sitios antigénicos de la membrana eritrocitaria humana para disminuir el riesgo de aloinmunización en transfusiones sanguíneas (1). Los copolímeros analizados en el presente trabajo fueron diseñados con ramificaciones sobre una secuencia central de un polímero policatiónico capaz de unirse al glicocálix de la membrana eritrocitaria por interacción iónica. Las ramificaciones laterales están compuestas por segmentos flexibles de polietilenglicol (PEG), los cuales actuarían como barrera, impidiendo el reconocimiento y la opsonización, mejorando la hemocompatibilidad y asegurando la estabilidad física de los eritrocitos (2).
En trabajos previos (3-7) se ha demostrado que el recubrimiento con polímeros como el PEG y sus derivados, disminuye el reconocimiento antigénico y la inmunogenicidad de las células transfundidas modificadas. Esta disminución en el reconocimiento antigénico, o enmascaramiento de los sitios antigénicos por los policationes, no debe interferir la libre difusión de oxígeno y de pequeñas moléculas para mantener el normal funcionamiento y metabolismo celular, siendo de suma importancia, además, que no se produzcan alteraciones significativas en la capacidad de agregación de los eritrocitos, ya que esto influenciaría la microcirculación.
La agregación eritrocitaria es una interacción célula-célula que influye en el flujo sanguíneo in vivo (8). In vivo e in vitro, los eritrocitos se agregan naturalmente en presencia de macromoléculas plasmáticas que actúan como puentes intercelulares, formando agregados lineales conocidos como rouleaux (9) y cuando estos rouleaux se unen lateralmente forman grandes redes conocidas como amas. En consecuencia, el estudio de las posibles influencias sobre la agregación eritrocitaria de los copolímeros desarrollados, permitirá evaluar la biocompatibilidad de los mismos con los eritrocitos para futuras aplicaciones como por ejemplo el enmascaramiento de sitios antigénicos (10), como vehículos transportadores de fármacos, en terapia génica, etc.
Los parámetros hemorreológicos son indicadores confiables que pueden caracterizar la biocompatibilidad de estos polímeros (11). En trabajos previos (12), se analizó el efecto de tres copolímeros sintéticos policatión- PEG llamados Semo B22, Semo B86 y Semo B124, sobre las alteraciones en las propiedades viscoelásticas eritrocitarias con un eritrodefórmetro, variando la concentración de los mismos. Se observó que los 3 policationes alteran levemente, pero de diferente manera, las propiedades reológicas de la membrana eritrocitaria, siendo el B22 y el B86 los que producirían mayor alteración, evidenciada tanto en el índice de deformabilidad, como en el parámetro dinámico correspondiente al desfasaje entre la respuesta eritrocitaria y la tensión de corte aplicada.
El objetivo del presente trabajo fue optimizar el protocolo de tratamiento de los eritrocitos humanos con los copolímeros Semo B86 y Semo B124, a fin de mejorar su biocompatibilidad con los componentes sanguíneos para su uso con fines terapéuticos. Para ello se analizaron las alteraciones que estos copolímeros produjeron sobre la agregación y la morfología eritrocitaria, mediante microscopía convencional y confocal, y el análisis digital de imágenes. Se analizó en particular la influencia del tiempo de incubación de las células con estos compuestos, a fin de obtener el más adecuado para la utilización de los mismos.

Materiales y Métodos

SUSPENSIONES ERITROCITARIAS

Las muestras sanguíneas humanas provenientes de dadores sanos (n = 4) fueron anticoaguladas con EDTA y centrifugadas a 2000 rpm a 25 ºC durante 5 min. Luego de descartar el plasma y la capa leuco-plaquetaria, los eritrocitos fueron lavados tres veces con buffer fosfato salino pH 7,4 y osmolaridad 295 mOsm/kg (PBS). Finalmente, los eritrocitos de cada muestra sanguínea fueron resuspendidos al 12% en el mismo buffer.

SOLUCIONES DE COPOLÍMEROS

Para este estudio se utilizaron dos copolímeros sintéticos desarrollados en base a la estructura del poli(2- (dimetilamino)etil metacrilato-co-polietilenglicol) o P(DMAEMA)-b-P(MAPEG), llamados Semo B86 y Semo B124. Dichos copolímeros poseen cargas positivas a pH 7,4 y fueron sintetizados de acuerdo con un nuevo procedimiento controlado de polimerización (13-15). La estructura y propiedades de los mismos se presentan en la Figura 1.


Figura 1. Arquitectura y propiedades moleculares de los copolímeros sintéticos policatión-PEG utilizados en este trabajo. (a) Semo B124: copolímero "palmera" con los segmentos de PEG ubicados específicamente en el extremo de la cadena policatiónica. (b) Semo B86: copolímero estadístico con los segmentos de PEG ubicados al azar a lo largo de la cadena policatiónica.

Se prepararon soluciones de droga sólida a 50 μg/mL en PBS, según el procedimiento descrito por Grandfils y Emonds-Alt (16).

INTERACCIÓN DE LOS COPOLÍMEROS CON LA MEMBRANA ERITROCITARIA

Se incubó 1 mL de suspensión eritrocitaria con 1 mL de cada solución de copolímeros a diferentes tiempos (10, 60, 120 y 150 min) bajo agitación lateral continua de 100 rpm y a una temperatura de (25,0 ± 0,5) ºC. Como control se incubó 1 mL de suspensión eritrocitaria con 1 mL de PBS. Concluida la incubación, los eritrocitos fueron lavados 3 veces con PBS. Las experiencias fueron realizadas por duplicado. Finalmente, para cada muestra sanguínea se obtuvieron 9 suspensiones eritrocitarias: la suspensión control y las tratadas con ambos copolímeros a los 4 tiempos diferentes de incubación.

ANÁLISIS DE LA DISTRIBUCIÓN DE TAMAÑO DE LOS AGREGADOS ERITROCITARIOS

Los eritrocitos tratados y control fueron suspendidos en plasma autólogo al 2% y mantenidos en reposo durante 15 min para inducir la agregación. Cada suspensión fue examinada en un portaobjeto excavado ubicado sobre la platina de un Microscopio Óptico Invertido (Union Optical, Japón). Las imágenes de las diferentes poblaciones de agregados fueron obtenidas por triplicado con un objetivo de 40X y una cámara CCD (Sony XC-75, Japón) para cada suspensión eritrocitaria. Utilizando los programas IPlab e IPPlus, se realizó un conteo de agregados, clasificándolos de acuerdo con las siguientes cuatro categorías: células individuales; agregados de 2, 3 ó 4 células; agregados de 5 ó más células y amas (redes de agregados de gran tamaño). Posteriormente se calculó el porcentaje correspondiente a cada categoría para cada suspensión eritrocitaria y finalmente estos porcentajes fueron promediados para todas las muestras sanguíneas estudiadas.

ANÁLISIS DE LA MORFOLOGÍA ERITROCITARIA

Las muestras de eritrocitos control y tratados fueron incubadas con el marcador lipofílico fluorescente DiI 3,3'-dioctadecil-oxacarbocianina perclorato (2,15 mM, λex = 549 nm, λem = 565 nm) de acuerdo con las recomendaciones del proveedor (Molecular Probes, Internacional Invitrogen). Posteriormente fueron observadas en un microscopio confocal (Nikon, Japón) con el fin de evaluar las posibles alteraciones en la morfología eritrocitaria luego del tratamiento con las soluciones de ambos copolímeros.

Resultados

Se estudió el efecto de los copolímeros B86 y B124 sobre la agregación y la morfología eritrocitaria. En la Figura 2 se presentan imágenes de agregados eritrocitarios control y los correspondientes a incubaciones durante 60 min con los copolímeros estudiados, donde se puede observar que tanto la forma como la distribución de tamaño de los agregados ha sido modificada por la acción de los copolímeros.

Figura 2. Efecto de los copolímeros B86 y B124 sobre la agregación de eritrocitos humanos (imágenes obtenidas en un microscopio invertido con un objetivo de 40X y una cámara CCD Sony XC-75): (a) agregados eritrocitarios normales (rouleaux) correspondientes a la muestra control; (b) rouleaux pequeños correspondientes a los eritrocitos incubados durante 60 min con el copolímero B86; (c) agregados correspondientes a los eritrocitos incubados durante 60 min con el copolímero B124.

Se observa además, que para los eritrocitos tratados con Semo B86, los agregados presentaron forma de rouleaux pero fueron más pequeños que para el control, en cambio, para los tratados con Semo B124, la forma de los agregados fue diferente de la del rouleaux normal.
En la Tabla I se muestra la distribución de tamaño de los agregados eritrocitarios obtenidos, presentando los valores promedio de los porcentajes para cada categoría en función del tiempo de incubación. Se observa claramente que aumentó el porcentaje de células individuales en las muestras tratadas con los copolímeros, y disminuyó el porcentaje de grandes agregados (de 5 o más células) y de amas.

Tabla I. Distribución de tamaño de los agregadose eritrocitarios. valores promedio de porcentajes para cada categoría versus tiempo de incubación de los eritrocitos con los copolímeros Semo B86 y Semo B124. Los resultados son presentados como media ± desvío estándar (n=4).

Los estudios de morfología eritrocitaria realizados mediante microscopía confocal, no mostraron alteraciones de los eritrocitos por el tratamiento con los copolímeros en ninguno de los tiempos de incubación ensayados (datos no mostrados).

Discusión y Conclusiones

Se estudió la influencia de dos copolímeros sintéticos sobre la morfología y agregación eritrocitaria. Se observó que la acción de los mismos sobre los eritrocitos, si bien no produjo cambios en la morfología celular, indujo alteraciones en la composición de los agregados eritrocitarios. Estas alteraciones se evidenciaron principalmente por un aumento del porcentaje de células individuales y una disminución del porcentaje de grandes agregados (amas). Este efecto resultó ser mayor con el Semo B86, haciéndose más significativo a medida que aumentó el tiempo de incubación. A partir de estos resultados, se adoptó 60 min como tiempo óptimo de incubación, dado que a partir de allí las alteraciones fueron cada vez más significativas.
Estos resultados muestran que el efecto del tiempo de incubación es un parámetro importante que debe ser considerado para el tratamiento de los eritrocitos humanos con copolímeros, tal como fuera señalado recientemente por Li (21) para el enmascaramiento de sitios antigénicos. Sugieren, además, que los dos copolímeros estudiados difieren en su mecanismo de interacción con la membrana celular. Tal como fue las glicoforinas (10)(17), estas diferencias podrían deberse no sólo a la diferencia de densidad de PEG por cadena del polímero, sino también debido a la menor masa molecular del PEG del Semo B86 (Fig. 1).
Estos estudios brindan un mejor conocimiento de la acción de los copolímeros policatión-PEG (Semo B86 y Semo B124) sobre los eritrocitos, en lo que respecta a su influencia en la morfología celular y la agregación eritrocitaria. La evaluación de estas características hemorreológicas es de gran importancia en la microcirculación, evidenciándose en particular en diversas patologías vasculares (8)(18-20).
Se puede concluir también que las técnicas presentadas en este trabajo son herramientas útiles para evaluar la biocompatibilidad desde el punto de vista hemorreológico de policationes sintéticos que interactúan con eritrocitos humanos, pudiendo extenderse al estudio de la hemocompatibilidad de otros polímeros sintéticos diseñados para futuras aplicaciones con diversos fines terapéuticos (terapia génica, nuevos antibióticos, etc.) como también en transfusión sanguínea (enmascaramiento de antígenos eritrocitarios).

AGRADECIMIENTOS

Los autores desean expresar su agradecimiento a la Agencia Nacional de Promoción Científica y Tecnológica (ANPCyT) por el apoyo económico brindado mediante el PICT 03-14483 dentro del marco del proyecto "Investigación de policationes destinados a enmascarar antígenos eritrocitarios. Caracterización mecanobiológica y de hemocompatibilidad de eritrocitos modificados por las interacciones policationes-membrana eritrocitaria".

CORRESPONDENCIA

DRA. BIBIANA RIQUELME
Pasaje Salamanca 1021
2000 ROSARIO, Argentina

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Aceptado para su publicación el 17 de febrero de 2009