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Revista argentina de microbiología

Print version ISSN 0325-7541

Rev. argent. microbiol. vol.44 no.4 Ciudad Autónoma de Buenos Aires Dec. 2012

 

AGENTES ANTIMICROBIANOS

Evaluación de diversos métodos fenotípicos para la detección de carbapenemasas KPC en Klebsiella pneumoniae

 

Federico G. Nicola*, Jimena Nievas, Jorgelina Smayevsky

Laboratorio de Bacteriología, Micología y Parasitología; Departamento de Análisis Clínicos - Centro de Educación Médica e Investigaciones Clínicas. Galván 4102 (1431) Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina

*Correspondencia. E-mail: finicola@cemic.edu.ar

 


RESUMEN

Se investigó el desempeño de diversos métodos fenotípicos para la detección de carbapenemasas KPC en 44 aislamientos de Klebsiella pneumoniae con sensibilidad disminuida a los carbapenems, 30 productores y 14 no productores de KPC. Se determinó la sensibilidad a imipenem, meropenem y ertapenem por dilución en agar y difusión por discos. Se evaluaron los siguientes métodos fenotípicos: sinergia entre discos de carbapenems y discos con los inhibidores amoxicilina/ácido clavulánico (AMC ) y ácido aminofenilborónico (APB); inhibición por "discos combinados" (según una técnica de predifusión diseñada a tal fin en nuestro laboratorio), comparando el efecto de los carbapenems solos o asociados con los inhibidores mencionados; y el test de Hodge modificado, para el cual se propone una lectura cuantificada. El método de Hodge detectó todos los aislamientos KPC positivos con los tres carbapenems evaluados, mientras que fue negativo para todos los aislamientos KPC negativos con imipenem y meropenem, y produjo dos resultados falsos positivos con ertapenem. Cuantificando la lectura de este método se pudieron discriminar objetivamente los resultados verdaderos positivos (≥ 8 mm) de los falsos positivos (< 5 mm). Se observó sinergia entre carbapenems y APB con todos los aislamientos KPC positivos, aunque esto requirió ajustar la distancia entre discos. En los aislamientos KPC negativos no se observó sinergia entre carbapenems y APB. Empleando el método con discos combinados con imipenem o meropenem más APB se detectaron la mayoría de los aislamientos KPC positivos y no se observaron falsos positivos. Por el contrario, las combinaciones carbapenem más AMC no fueron sensibles ni específicas.

Palabras clave: Carbapenemasas KPC; Detección fenotípica; Hodge cuantificado; Predifusión.

ABSTRACT

Evaluation of phenotypic methods for the detection of KPC carbapenemases in Klebsiella pneumoniae. We evaluated phenotypic methods for the detection of KPC carbapenemases in 44 clinical isolates of K. pneumoniae having reduced susceptibility to carbapenems, 30 of which were KPC-positive and 14 KPC-negative. Both the agar dilution and disk diffusion methods were performed for imipenem, meropenem and ertapenem. The following phenotypic methods were assayed: the double disk synergy test, using boronic acid or clavulanic acid as inhibitors, "combined" disks of carbapenem plus inhibitor (boronic acid, clavulanic acid and both boronic plus clavulanic acid), by using a pre-diffusion technique and the modified Hodge test. The double disk diffusion test using boronic acid could detect all KPC-positive isolates, but adjustment of disk distance was necessary for achieving such performance. The simulation of combined disks by our pre-diffusion technique detected all KPCpositive strains for all 3 carbapenems when using boronic acid as inhibitor, clavulanic acid was less susceptible and specific as compared with boronic acid. The modified Hodge test using any carbapenem was clearly positive for all KPC-producing isolates. This test was negative for all KPC-negative strains when imipenem or meropenem were used, but 2/14 isolates yielded a weak positive result when using ertapenem. By measuring the enhanced growth of E. coli ATCC 25922 observed in this test, we could objectively discriminate true-positive (≥ 8 mm) from false-positive results (< 5 mm). Our results show that the use of phenotypic methods is effective for the rapid detection of KPC producers in K. pneumoniae isolates with reduced susceptibility to carbapenems.

Key words: KPC carbapenemase detection; Phenotypic methods; Modifed Hodge test; Pre-diffusion technique.


 

INTRODUCCIÓN

Los carbapenems son antibióticos ß-lactámicos de amplio espectro con actividad bactericida frente a bacterias gram positivas y gram negativas, tanto aeróbicas como anaeróbicas (41). Debido a estas propiedades, los carbapenems han sido inicialmente considerados como antibióticos de reserva para ser empleados solo frente a casos puntuales. Sin embargo, dado el aumento general de la resistencia a los antibióticos, cada vez se los ha utilizado con mayor frecuencia y hoy en día son parte de la terapéutica empírica inicial en diversas circunstancias (1, 24, 29, 40).

Este uso habitual de los carbapenems ha llevado al aumento de la resistencia a estos antibióticos, principalmente en Pseudomonas aeruginosa y en el complejo Acinetobacter baumannii-calcoaceticus, microorganismos en los que pueden estar involucrados múltiples mecanismos de resistencia (22, 27, 28, 34).

Hasta hace relativamente pocos años la resistencia a carbapenems en las enterobacterias era una verdadera rareza microbiológica, mediada principalmente por la presencia conjunta de ß-lactamasas de espectro extendido (BLEE ) e impermeabilidad (21, 23). No obstante, hace algo más de diez años se describieron las primeras enterobacterias productoras de carbapenemasas, es decir, ß-lactamasas capaces de hidrolizar eficientemente a los carbapenems (35, 38). Poco tiempo después se documentaron en diversas partes del mundo brotes epidémicos producidos por enterobacterias productoras de carbapenemasas, por lo general del tipo KPC (Klebsiella pneumoniae carbapenemasa) (9, 12, 14). Los estudios sobre la epidemiología molecular de las carbapenemasas revelaron que estas se encuentran en elementos móviles fácilmente transmisibles, lo que resalta la importancia epidemiológica de este nuevo mecanismo de resistencia (24, 35, 38). En ciertas regiones, como en la costa este de EE .UU., los aislamientos de Klebsiella pneumoniae productores de carbapenemasas KPC ya son endémicos (5, 12, 14).

En nuestro país, hasta hace algunos años el principal mecanismo de sensibilidad disminuida a los carbapenems en enterobacterias continuaba siendo la conjunción de BLEE e impermeabilidad (31). Sin embargo, algunas publicaciones recientes dan cuenta de la emergencia de enterobacterias productoras de carbapenemasas del tipo KPC (17, 32).

Estas enzimas pertenecen al grupo 2f de la clasificación de Bush-Medeiros (clase A de Ambler) y son parcialmente inhibidas por ácido clavulánico, sulbactama y tazobactama (7, 8, 35). Hace poco se informó que este tipo de enzimas también resultan inhibidas por el ácido borónico (y derivados análogos), un conocido inhibidor de las cefalosporinasas de tipo AmpC (grupo 1 o clase C) (13, 32). Asimismo, se ha comunicado que bacterias con carbapenemasas podrían ser categorizadas como "sensibles" con los métodos habituales de estudio de sensibilidad a los antibióticos (2, 30, 36). Esta situación condujo a la revisión de los puntos de corte por parte del CLSI en junio de 2010 (10). Aun así, detectar la presencia de carbapenemasas y categorizar correctamente la sensibilidad a carbapenems en aislamientos clínicos sigue siendo un problema para muchos laboratorios de microbiología (15).

Si bien las técnicas moleculares son consideradas los métodos de referencia para confirmar la presencia de los genes de las diferentes carbapenemasas, estas técnicas no suelen estar disponibles en el contexto de la práctica clínica habitual. Por tal motivo se han propuesto diversos ensayos fenotípicos para detectar presuntivamente la presencia de carbapenemasas en aislamientos clínicos. Uno de ellos es el método de Hodge modificado, que permite inferir una actividad enzimática sobre un determinado antibiótico en un aislamiento dado. También existen otros métodos fenotípicos basados en la capacidad de ciertas sustancias para inhibir a estas enzimas, como el ácido borónico y el ácido clavulánico, que inhiben a las carbapenemasas de clase A, o el ED TA, que inhibe a las de clase B (7, 13, 15, 16, 25, 32, 33).

De modo similar a lo acontecido en otros centros de salud de Argentina, a partir de mediados de 2009 hemos observado en nuestra institución la emergencia de enterobacterias resistentes a carbapenems (principalmente K. pneumoniae) productoras de carbapenemasa KPC-2, según el resultado de la PCR específica para amplificar genes kpc y la ulterior secuenciación del producto amplificado (3).

Los objetivos de este trabajo fueron evaluar diferentes métodos fenotípicos para la detección de aislamientos de K. pneumoniae productores de carbapenemasas tipo KPC y describir los resultados de las pruebas de sensibilidad habituales, teniendo en cuenta los nuevos puntos de corte del CLSI.

MATERIALES Y MÉTODOS

Microorganismos

Se estudiaron aislamientos clínicos únicos de K. pneumoniae con sensibilidad disminuida a carbapenems, definida por la formación de halos de inhibición ≤ 21 mm en presencia de imipenem (IMI ), meropenem (MER ) o ertapenem (ETP). Se incluyeron 30 aislamientos productores de carbapenemasas KPC, según el resultado de la PCR recién citada. Los cebadores específicos para genes kpc utilizados fueron KPC-f CC GTCTAGTTCTGCTGTC y KPC-r CGTTGTCA TCC TTGTTAG; las condiciones de amplificación fueron 30 ciclos de 1 min a 95 ºC, 30 s a 52 ºC y 2 min a 72 ºC. Se obtuvo así un fragmento de amplificación de 800 pb, tal como ya fue documentado en un estudio previo (3). A fin de poder comparar apropiadamente los métodos fenotípicos evaluados en este estudio, se incluyeron también 14 aislamientos no productores de enzimas KPC de acuerdo con los resultados de la citada PCR (3). En el estudio previo antes mencionado, todos los aislamientos habían sido negativos en ensayos de inhibición con ED TA, y en los KPC negativos, además, se había confirmado por PCR específicas la presencia de BLEE del grupo CTX-M-2 y la ausencia de carbapenemasa OXA-48, utilizando los iniciadores ya descritos (35).

Los microorganismos KPC positivos fueron recuperados de las siguientes muestras: sangre (n = 10), orinas (n = 7), piel y partes blandas (n = 6), líquidos abdominales (n = 3), aspirados traqueales (n = 2) y catéteres (n = 2).

Las cepas Escherichia coli ATCC 25922 y P. aeruginosa ATCC 27853 fueron incluidas como controles de calidad de las pruebas de sensibilidad

A - Pruebas de sensibilidad

Concentración inhibitoria mínima: se determinaron las CIM de IMI, MER y ETP según el método de dilución en agar, de acuerdo con las normativas del CLSI (11).

Método de difusión por discos: se determinó la sensibilidad a IMI (10 μg, Oxoid, Reino Unido), MER (10 μg, Oxoid) y ETP (10 μg, BD, EE .UU.), según las recomendaciones del CLSI para esta metodología (11).

B - Ensayos fenotípicos

Método de Hodge modificado y cuantificación de la prueba: se ensayó el método de Hodge modificado para los tres carbapenems mencionados anteriormente, según recomendaciones del CLSI (11). Además, con la intención de objetivar la interpretación de los resultados obtenidos con este método, se cuantificó el sobredesarrollo de la cepa E. coli ATCC 25922 en el halo de inhibición hacia el disco del carbapenem. Para ello, se midió la distancia en milímetros en que el desarrollo de esta cepa se adentraba hacia el disco del carbapenem sobre la estría del aislamiento en estudio (Figura 4).

Método de difusión de doble disco: se evaluó la existencia de sinergia entre cada carbapenem (IMI, MER y ETP) y el ácido clavulánico o el ácido borónico mediante el método de difusión de doble disco (25, 31). Se hisoparon placas de agar Mueller-Hinton (Laboratorios Britania, Argentina) con una suspensión 0,5 Mc Farland del aislamiento en estudio. Luego se colocó un disco de ácido 3-aminofenilborónico 300 μg (APB) (Laboratorios Britania) a una distancia de 2 cm, centro a centro, frente a los discos de cada carbapenem. La misma metodología se realizó con discos de amoxicilina / ácido clavulánico 20/10 μg (AMC ) (Oxoid). Se incubaron las placas 20-24 h en estufa a 35 ºC. El agrandamiento del halo de inhibición del carbapenem hacia el lado del disco con el inhibidor se interpretó como un resultado positivo. En aquellos aislamientos cuyos halos de inhibición alrededor de los discos de carbapenems fue menor de 14 mm, este ensayo se repitió ajustando la distancia entre los discos de los carbapenems y los inhibidores a 1,2 cm (centro a centro).

Método de "discos combinados" obtenidos mediante una técnica de predifusión: se determinaron los halos de inhibición del desarrollo bacteriano obtenidos con cada carbapenem solo y con la combinación de cada carbapenem con APB, con AMC y con ambos a la vez (25, 31). Dado que tales discos con la combinación carbapenem más inhibidor no están disponibles comercialmente y que los laboratorios de microbiología clínica no suelen contar con los inhibidores como droga (de manera de poder adicionarlos a los discos de los carbapenems), estas combinaciones fueron generadas utilizando una metodología diseñada por nosotros a tal fin, basada en la técnica conocida como predifusión de discos (4, 19, 37), tal como se describe a continuación.

En primer lugar, se colocaron dos discos de AMC sobre una placa de agar Mueller-Hinton sin inocular y se incubó en estufa a 35 ºC por un lapso de 4 h. Seguidamente, se retiraron los discos de AMC y se colocaron dos discos de APB, uno encima de donde había estado uno de los discos de AMC y el otro en un lugar diferente; se incubó nuevamente la placa en estufa por otras 4 h adicionales (Figura 1, pasos 1 y 2). Posteriormente, tras retirar los discos de APB, se inoculó la placa mediante hisopado de una suspensión 0,5 Mc Farland del aislamiento en estudio y luego se colocaron 4 discos del carbapenem correspondiente (con una placa diferente para cada carbapenem), de modo tal que un disco del carbapenem quedó en un lugar previamente no utilizado (carbapenem solo), otro donde solo estuvo un disco de APB (carbapenem + APB), otro donde estuvo un disco de AMC (carbapenem + AMC ) y el cuarto donde se habían colocado sucesivamente primero un disco de AMC y luego uno de APB (carbapenem + AMC + APB) (Figura 1, paso 3).

Figura 1. Técnica de predifusión para el método de inhibición con "discos combinados"

Las placas fueron luego incubadas en estufa a 35 ºC durante 18-20 h, y se midieron entonces los halos de inhibición correspondientes. Una diferencia de 4 mm entre el halo de inhibición del carbapenem más inhibidor/es respecto del halo del carbapenem solo se consideró un resultado positivo en este ensayo.

Los tiempos y temperaturas de la técnica de predifusión antes descrita se eligieron sobre la base de una serie de ensayos previos con discos de AMC y las cepas E. coli ATCC 25922 y E. coli ATCC 35218 (datos no mostrados). Bajo las condiciones de predifusión mencionadas, con ambas cepas ATCC se obtuvieron halos de inhibición de igual tamaño (± 1-2 mm) que los obtenidos con el método de difusión estándar (realizado en forma simultánea). Esto se incluyó como control de calidad de la técnica de predifusión en cada ensayo realizado.

RESULTADOS

A- Pruebas de sensibilidad

En las Figuras 2A, 2B y 2C se muestra la distribución de los valores de CIM obtenidos con los carbapenems IMI, MER y ETP, respectivamente. Se aprecia que la CIM de IMI fue ≤ 1 μg/ml (punto de corte de sensibilidad propuesto por el CLSI en junio de 2010) en 13 de 30 aislamientos KPC positivos; lo mismo ocurrió con MER en 8 aislamientos. Ningún aislamiento KPC positivo mostró una CIM de ETP por debajo del nuevo punto de corte de sensibilidad (≤ 0,25 μg/ml). Las medianas de las CIM de IMI, MER y ETP en los aislamientos KPC positivos fueron 4 μg/ml, 2 μg/ml y 4 μg/ml, respectivamente. Por su parte, las medianas de las CIM de dichos antibióticos en los aislamientos KPC negativos fueron, en igual orden, 2 μg/ml, 4 μg/ml y 8 μg/ml.

Figura 2. Valores de CIM de los carbapenems obtenidos con el método de dilución en agar

En las Figuras 3A, 3B y 3C se muestra la distribución de los tamaños de los halos de inhibición obtenidos al evaluar la sensibilidad frente a los tres carbapenems. Los 30 aislamientos KPC positivos mostraron halos ≤ 21 mm, tanto con IMI (media: 15 mm; rango: 6-21 mm) como con ETP (media: 11,9 mm; rango: 6-19 mm). Asimismo, 28 de 30 aislamientos KPC positivos dieron halos ≤ 21 mm al ser expuestos a MER (media: 15,6 mm; rango: 6-24 mm); de los dos restantes, uno dio un halo de 22 mm y el otro de 24 mm, este último fue el único aislamiento que hubiese sido categorizado como sensible con los nuevos puntos de corte del CLSI (10).

Figura 3. Distribución de los halos de inhibición de los carbapenems según el método de difusión con discos

En el grupo de los 14 aislamientos KPC negativos, los halos fueron ≤ 21 mm en 10 aislamientos con IMI (media: 20,4 mm; rango: 17-25 mm), en 13 con MER (media: 14,4 mm; rango; 10-22 mm) y en los 14 con ETP (media: 7,8 mm; rango: 6-15 mm).

B- Ensayos fenotípicos

En la Tabla 1 se muestran los resultados obtenidos con el método de Hodge modificado, el método de sinergia con doble disco y el método de inhibición con "discos combinados" (según técnica de predifusión antes detallada).

Tabla 1. Detección presuntiva de carbapenemasas tipo KPC con distintos métodos fenotípicos

Todos los aislamientos KPC positivos dieron positivo con el método de Hodge con los tres carbapenems estudiados. Los 14 aislamientos KPC negativos fueron Hodge negativos cuando se utilizaron IMI o MER, mientras que 2/14 resultaron Hodge positivos solo con ETP (Tabla 1). Al cuantificar este método, en todos los aislamientos KPC positivos el sobredesarrollo de E. coli ATCC 25922 fue ≥ 8 mm (media: 13,2 mm; rango: 8-18 mm) con cualquiera de los tres carbapenems (Figura 4). Por el contrario, en los aislamientos KPC negativos, cuando el test de Hodge se realizó con IMI o MER, en la mayoría de los casos no se observó sobredesarrollo (resultado = 0 mm para esta determinación) y en algunos se observaron ligeras distorsiones en la zona de inhibición de E. coli ATCC 25922, de 1-2 mm, al medir según esta propuesta (media: 1 mm; rango: 0-2 mm). Por su parte, al utilizar el ETP en este método, las distorsiones fueron un poco más frecuentes (media: 1,8 mm; rango: 0-4 mm), y en dos aislamientos se observaron sobredesarrollos de 4 mm (Figura 4), justamente en los dos aislamientos considerados falsos positivos con esta prueba (Tabla 1).


Figura 4. Método de Hodge modificado. El círculo negro demarca el halo de inhibición circular esperado con E. coli ATCC 25922. Las líneas rojas muestran el sobredesarrollo de E. coli ATCC 25922 hacia el disco del carbapenem (ertapenem en este caso), y los valores en milímetros obtenidos al cuantificarlo. En esta fotografía se muestran los notorios sobredesarrollos observados con un aislamiento KPC positivo y el control positivo (18 y 15 mm). También se muestra el leve sobredesarrollo (4 mm) obtenido con uno de los dos aislamientos KPC negativos considerados como falsos positivos por el método de Hodge con ertapenem.

Con el método de sinergia con doble disco, al utilizar una distancia fija de 2 cm entre los discos del inhibidor y el carbapenem, se observó sinergia con APB en la mayoría de los aislamientos KPC positivos cuando el antibiótico evaluado fue IMI o MER (Figura 5A), y solo en alrededor de la mitad de ellos cuando el carbapenem evaluado fue el ETP. Solo un tercio de los aislamientos KPC positivos, aproximadamente, mostraron sinergia entre AMC e IMI o MER, y apenas 5 mostraron sinergia entre AMC y ETP (Tabla 1). Con los aislamientos en que los halos de inhibición por carbapenems fueron ≤ 14 mm se volvió a realizar el ensayo de sinergia a una distancia de 1,2 cm entre los discos del carbapenem y del inhibidor (AMC o APB), y se observó sinergia en todos estos aislamientos KPC positivos con APB (Figura 5B), no así con AMC (Tabla 1). Por su parte, en los aislamientos KPC negativos no se observó sinergia entre los carbapenems y APB, pero sí se verificó sinergia entre MER y AMC en 3/14 aislamientos, y entre ETP y AMC en 5/14 aislamientos, incluso combinando los resultados de los ensayos a 2 cm y a 1,2 cm de distancia entre discos.

Figura 5. Método de sinergia con doble disco

Figura 5A. En esta fotografía se muestra el efecto sinérgico entre el disco de ácido fenilborónico (APB) con los carbapenems al colocar los discos a una distancia de 2 cm (centro a centro). Se han demarcado con círculos negros los halos de inhibición circulares esperados, para facilitar su observación. En la parte superior de la fotografía se muestra cómo el efecto sinérgico deja de apreciarse al alejar los discos.

Figura 5B. En esta fotografía se aprecia que cuando los halos de inhibición obtenidos con los carbapenems fueron muy pequeños (< 14 mm), la sinergia con APB solo se pudo observar al colocar los discos a una distancia de 1,2 cm (centro a centro) y no cuando dicha distancia fue de 2 cm. El recuadro es un acercamiento de esa parte de la placa para apreciar mejor el leve efecto sinérgico observado entre los discos.

Utilizando nuestro método de "discos combinados" por predifusión, la diferencia en el tamaño de los halos de inhibición del carbapenem más APB respecto del carbapenem solo fue ≤ 2 mm con todos los aislamientos KPC negativos. Por su parte, en los aislamientos KPC positivos se observó una diferencia ≥ 4 mm entre el halo formado por acción del carbapenem más APB respecto del carbapenem solo (Figura 6) en 28, 27 y 24 casos con IMI, MER y ETP, respectivamente (Tabla 1).


Figura 6. Método de "discos combinados" mediante una técnica de predifusión. Se muestra un ejemplo de halos obtenidos para el carbapenem solo (MER ), combinado con ácido clavulánico (MER + AMC ), combinado con ácido fenilborónico (MER + APB) y con la triple combinación que incluyó al carbapenem, al ácido clavulánico y al ácido fenilborónico (MER + AMC + APB).

Las combinaciones carbapenem más AMC resultaron claramente menos sensibles para detectar aislamientos KPC positivos (Tabla 1). Los discos con la triple combinación carbapenem + APB + AMC no aumentaron significativamente la sensibilidad, pues solo se detectaron dos aislamientos KPC positivos adicionales en el caso del MER y del ETP, y mostraron menor especificidad, ya que se obtuvieron resultados falsos positivos en 3/14 y en 4/14 aislamientos KPC negativos al incluir al MER o al ETP, respectivamente, en la triple combinación.

DISCUSIÓN

En los últimos años se ha informado la emergencia de K. pneumoniae productora de carbapenemasas de tipo KPC en diversos países, incluyendo la Argentina (5, 12, 17, 32). En nuestra institución hemos comprobado la reciente emergencia de aislamientos de K. pneumoniae resistentes a carbapenems; esta resistencia está mediada por una carbapenemasa KPC, cuyas características epidemiológicas y moleculares hemos descrito en publicaciones anteriores (3, 18). En esos estudios documentamos la diseminación en nuestra institución de un clon preponderante de K. pneumoniae portador de carbapenemasa KPC-2. No obstante, también observamos la presencia de esta enzima en otros clones de K. pneumoniae así como en aislamientos de Enterobacter cloacae y de Citrobacter freundii, lo que evidencia la enorme capacidad de transferencia de este mecanismo de resistencia (3, 18). Entonces, la rápida y eficaz detección de estas bacterias resulta crítica, no solo para la adecuada terapéutica del paciente, sino para instaurar medidas de control tendientes a evitar su diseminación (18, 25, 26).

Nuestros resultados coinciden con los obtenidos en estudios previos al poner de manifiesto que los aislamientos con sensibilidad disminuida a los carbapenems, presuntamente por impermeabilidad y producción de BLEE, exhiben una clara diferencia en las actividades de los distintos carbapenems (21). Así, estos aislamientos muestran mayor resistencia a ertapenem y menor resistencia a meropenem, mientras que el imipenem, por lo general, se presenta como el carbapenem más activo (barras grises en las Figuras 2 y 3), situación comúnmente conocida en nuestro país como "escalera fenotípica". Por el contrario, en los aislamientos con carbapenemasa tipo KPC, tal comportamiento no se observa claramente (barras negras en Figuras 2 y 3). No obstante, los resultados de las pruebas de sensibilidad no permiten discriminar fehacientemente si la resistencia a los carbapenems se debe a una carbapenemasa o a la conjunción de BLEE más impermeabilidad. Esta distinción es importante, tanto para encarar la adecuada terapéutica del paciente como para establecer las medidas de control de la infección más pertinentes (5, 15). En ese sentido, los resultados observados con el imipenem permiten inferir la presencia de este tipo de carbapenemasa en aquellos aislamientos con mayor expresión de resistencia, es decir, aquellos en los que la CIM fue ≥ 8 μg/ml (13/30 aislamientos KPC positivos; Figura 2A) o los que mostraron halos de inhibición ≤ 16 mm (17/30 aislamientos KPC positivos; Figura 3A).

Por otra parte, tal como ha sido descrito por diversos investigadores, los métodos de sensibilidad utilizados habitualmente en bacteriología clínica pueden presentar deficiencias para la correcta detección de enterobacterias productoras de carbapenemasas (2, 30, 36). Es por ello que en junio de 2010, el CLSI debió emitir un documento de actualización de los puntos de corte de sensibilidad para los carbapenems, tratando de mitigar esa situación (10).

En nuestro trabajo hemos podido observar que una gran proporción de los aislamientos KPC positivos hubieran sido considerados como sensibles a los carbapenems con los puntos de corte anteriores (10). Esta situación queda en gran medida subsanada al considerar los nuevos puntos de corte (10, 11) cuando se aplica el método de difusión, que es la metodología para evaluar la sensibilidad a los antibióticos más difundida en nuestro país y en el resto de Latinoamérica. No obstante, según los resultados de las CIM determinadas por dilución en agar, 13/30 y 8/30 aislamientos KPC positivos aún serían considerados como sensibles con los puntos de corte actuales para IMI y MER, respectivamente. Observaciones similares han realizado otros autores que trabajaron con el método epsilométrico o sistemas automatizados (15, 30, 36). Esto resulta sumamente preocupante dados los cambios en las recomendaciones del CLSI al respecto, en el sentido de que ya no se considera necesario ensayar el método de Hodge modificado ni ninguna otra prueba fenotípica para investigar la presencia de carbapenemasas, sino que basta informar la sensibilidad de acuerdo a la CIM de los carbapenems (11).

Las dificultades respecto de la determinación de sensibilidad a carbapenems recién comentadas constituyen un claro ejemplo en donde los puntos de corte para establecer la sensibilidad tomados sobre la base de índices farmacocinéticosfarmacodinámicos, pero independientes de los mecanismos de resistencia subyacentes, pueden ser peligrosamente erróneos. El propio CLSI sugiere que aún frente a microorganismos con KPC podrían emplearse carbapenems para el tratamiento, ya sea aumentando las dosis o utilizando dosificación continua, sobre la base del resultado de CIM obtenido (11). Esto podría representar un riesgo para pacientes con infecciones por bacterias productoras de KPC, en los que se han descrito fallas terapéuticas al utilizar carbapenems, aún cuando las CIM se ubican en el rango de sensibilidad actual (15, 20, 39). Esta situación podría deberse a una expresión inicialmente baja del gen kpc, sumada a un marcado efecto inóculo en estos aislamientos, tal como ha sido descrito por algunos autores (6, 15). De hecho, en ensayos preliminares donde determinamos las CIM de los carbapenems utilizando diferentes inóculos, observamos un marcado incremento en las CIM, de 2 a 8 diluciones, al aumentar 10 o 100 veces el inóculo utilizado (datos no mostrados, manuscrito en preparación). Es posible que este fenómeno pueda explicar, en parte, nuestro hallazgo de un mejor desempeño del método de difusión (inóculo de 108 UFC/ml) comparado con el de la CIM en agar (inóculo de 104 UFC/spot) para clasificar como resistentes a aislamientos KPC positivos.

Se han propuesto diversos métodos fenotípicos para la detección presuntiva de carbapenemasas de clase A, tales como los aquí evaluados: Hodge modificado, sinergia enfrentando discos de carbapenems y de ácido fenilborónico e inhibición con discos combinados carbapenem/ácido fenilborónico (13, 16, 25, 31). Nuestros resultados muestran que los métodos fenotípicos son una herramienta sencilla y útil, que permite sospechar la presencia de carbapenemasas KPC en aislamientos de enterobacterias en el laboratorio. Tanto el método de Hodge modificado (con IMI o MER ) como el método de sinergia entre discos del carbapenem y discos de APB o el método de inhibición con discos del carbapenem solo y con "discos combinados" (los que incluían el carbapenem más APB) fueron útiles para la detección fenotípica de aislamientos con este tipo de carbapenemasas. Por su parte, el ácido clavulánico demostró ser un inhibidor menos sensible y específico que el APB para ser empleado en estos ensayos.

Se ha descrito que si bien el método de Hodge es sensible para detectar la presencia de ß-lactamasas, en particular carbapenemasas en enterobacterias, puede presentar resultados falsos positivos en aislamientos con sensibilidad disminuida a carbapenems por combinación de BLE más impermeabilidad (15, 31). Nuestros resultados tienden a corroborar esas observaciones, ya que se observaron resultados positivos con todos los aislamientos KPC positivos y también falsos resultados positivos en unos pocos aislamientos KPC negativos, aunque únicamente con ETP (Tabla 1 y Figura 4). No advertimos esa falta de especificidad del ensayo de Hodge modificado cuando se utilizaron IMI o MER, quizás porque solo hemos podido incluir 14 aislamientos KPC negativos. No obstante, tal como describieron Endimiani et al. (15), la distorsión en el halo de E. coli ATCC 25922 obtenida con los aislamientos KPC positivos era claramente distinguible, no así la apreciada con los dos aislamientos KPC negativos, que fueron considerados falsos positivos con este método. Midiendo los milímetros de este sobredesarrollo (tal como se describe en Materiales y Métodos) fuimos capaces de cuantificar y así objetivar esta apreciación subjetiva. Consideramos que esta estrategia es sumamente interesante, ya que permite una mejor definición en la interpretación del método de Hodge, lo que podría disminuir la probabilidad de obtener resultados falsos positivos y mejoraría la especificidad y eficacia de este método. De hecho, todos los aislamientos KPC positivos mostraron sobredesarrollos ≥ 8 mm, mientras que los KPC negativos nunca superaron los 4 mm. Sobre la base de estos resultados se podría sugerir un punto de corte tentativo para interpretar como positivo un resultado del método de Hodge cuando el sobredesarrollo en el halo de inhibición de E. coli ATCC 25922 es mayor que 5-8 mm.

El bajo número de aislamientos KPC negativos incluidos en este estudio limita el alcance de estos hallazgos, a la vez que refleja la epidemiología actual en nuestro medio. De hecho, todos los aislamientos KPC negativos incluidos fueron recuperados en los años 2007-2008, mientras que a partir del 2009 todos nuestros aislamientos con sensibilidad disminuida a carbapenems fueron productores de enzimas de tipo KPC (3, 18). En un contexto donde los aislamientos productores de KPC son más frecuentes que aquellos con sensibilidad disminuida a carbapenems por impermeabilidad más producción de BLEE, el valor predictivo positivo del método de Hodge es mayor (menor probabilidad que un resultado positivo sea falso).

El método de sinergia entre discos de carbapenems y APB resultó altamente específico, ya que no se obtuvieron falsos positivos con este método en aislamientos con sensibilidad disminuida a carbapenems por impermeabilidad más BLEE. No obstante, para alcanzar la máxima sensibilidad, la distancia debió ajustarse de acuerdo al diámetro de inhibición de los carbapenems. Tal como se presenta en la Tabla 1, realizando esta prueba a una distancia fija de 2 cm entre el disco de APB y el de carbapenem, no se pudo demostrar sinergia en algunos aislamientos KPC positivos, justamente en aquellos con halos de inhibición muy pequeños (6-14 mm). Ajustando la distancia entre discos a 1,2 cm (centro a centro) se pudo evidenciar un efecto sinérgico entre el APB y los tres carbapenems en todos estos aislamientos KPC positivos, aunque con cierta dificultad (Figura 5B). De este modo, concluimos que este método resulta altamente sensible y específico, pero la técnica e interpretación es sin duda subjetiva y dependiente del operador, y además, se requiere ajustar la distancia entre los discos de acuerdo al tamaño del halo de inhibición de los carbapenems.

El método de inhibición con discos combinados ha demostrado ser muy eficaz para detectar otras ß-lactamasas, en particular BLE, por lo que es sugerido por el CLSI para ese fin (11) y es ampliamente utilizado en los laboratorios de microbiología clínica. Por ello resulta plausible, al menos en teoría, que la misma metodología pueda ser de utilidad para detectar carbapenemasas de clase A, en particular KPC (25).

Al momento de realizar este estudio no estaban comercialmente disponibles en nuestro país los discos combinados de carbapenems e inhibidores, ya sea AMC o APB, dos inhibidores de estas carbapenemasas. Por tal motivo ideamos un método alternativo para simular tales discos combinados, basado en la técnica de predifusión, como se describió en Materiales y Métodos. La combinación de carbapenems con APB según esta metodología resultó muy específica y aceptablemente sensible para la detección de carbapenemasas tipo KPC. La combinación de carbapenems con AMC fue notoriamente menos efectiva para este fin. Con la triple combinación de carbapenems con AMC y APB, si bien en general se obtuvieron halos 1-2 mm más grandes que con el carbapenem más APB (datos no mostrados), tomando como punto de corte una diferencia ≥ 4 mm respecto del halo del carbapenem solo, la combinación de estos dos inhibidores permitió detectar solo dos aislamientos KPC positivos adicionales con MER y ETP. No obstante, 3/14 y 4/14 aislamientos KPC negativos también serían considerados positivos para MER y ETP, respectivamente, lo que determina una disminución de la especificidad del método (Tabla 1).

Podemos afirmar que utilizando la metodología de inhibición con discos combinados se logra objetivar un resultado positivo según un punto de corte medible (ej: diferencias ≥ 4 mm), lo que tiende a disminuir la dependencia del observador, la cual existe con el método de sinergia con doble disco. Aun cuando en nuestro estudio incluimos controles internos, reconocemos que la metodología de predifusión utilizada en este estudio es sumamente "artesanal", está sujeta a posibles errores no evidenciables y es muy laboriosa como para su implementación de rutina en laboratorios de microbiología clínica. No obstante, los promisorios resultados obtenidos son un aliciente para el desarrollo formal de este tipo de discos por parte de los fabricantes de reactivos diagnósticos.

En definitiva, podemos concluir que los métodos fenotípicos para la detección de bacterias con carbapenemasas KPC son confiables y fáciles de implementar en los laboratorios de microbiología clínica. Esto resulta de enorme importancia desde el punto de vista terapéutico, epidemiológico y de control de infecciones. Una rápida y eficaz detección de este tipo de microorganismos, tanto frente a casos probados de infección como frente a la sospecha de portadores de bacterias con carbapenemasas, permite no solo ajustar adecuadamente la terapia del paciente individual, sino también instaurar precozmente múltiples medidas de prevención con la intención de limitar, evitar o controlar la diseminación de estas carbapenemasas, tan fácilmente transmisibles.

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Recibido: 8/5/2012
Aceptado: 14/8/2012

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