IMAGEN MICROBIOLÓGICA

https://doi.org/10.1016/j.ram.2018.05.006

Microscopía electrónica de Histoplasma capsulatum aislado de un paciente con histoplasmosis diseminada

Histoplasma capsulatum electron microscopy isolated from a patient with disseminated histoplasmosis

 

Dina Pedersen^a,b, Carlos Fiore^b, Alicia Arechavala^c, Laura Paniccia^a,b y Marcelo Occhionero^a,*

^a Cátedra de Bacteriología y Micología, Departamento de Biología, Bioquímica y Farmacia, Universidad Nacional del Sur, Bahía Blanca, Argentina
^b Hospital Municipal de Agudos «Dr. Leónidas Lucero», Bahía Blanca, Argentina
^c Hospital de Infecciosas «F.J. Muñiz», CABA, Argentina

Recibido el 16 de abril de 2018; aceptado el 10 de mayo de 2018
Disponible en Internet el 28 de octubre de 2018

* Autor para correspondencia.

Correos electrónicos: mrocchionero@yahoo.com.ar, mocchion@uns.edu.ar (M. Occhionero).

0325-7541/© 2018 Asociación Argentina de Microbiología. Publicado por Elsevier Espana, S.L.U. Este es un artículo Open Access bajo la licencia CC BY-NC-ND (http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/).

Histoplasma capsulatum es un hongo térmicamente dimorfo, que crece en forma micelial a temperatura ambiente y en forma de levadura a 37°C. La fase micelial muestra en la microscopía hifas hialinas de 1,2 a 2,5 µm de diámetro, ramificadas y tabicadas, con microconidios piriformes o esféricos de 2 a 4 µm de diámetro a los lados de las hifas, y macroconidios esféricos con apéndices digitiformes de 8 a 14 µm de diámetro¹.

Las formas clínicas diseminadas de histoplasmosis son poco frecuentes y se relacionan con alteraciones graves de la inmunidad, como se observa en pacientes VIH positivos^3,4.

El aislamiento de H. capsulatum se realizó a partir de hemocultivos y lavados broncoalveolares de un paciente internado en el Hospital Municipal de Bahía Blanca, en mayo de 2015. Durante su internación se diagnosticó infección por VIH, con un recuento de linfocitos T CD4+ de 38/µl.

Del medio Sabouraud glucosado con desarrollo de colonias de H. capsulatum se cortaron pequeñas porciones y se fijaron con glutaraldehído al 2,5% en buffer fosfato (pH 7,2). Luego las muestras fueron sometidas a concentraciones crecientes de alcohol etílico (25, 50, 75 y 100%) durante 15min en cada concentración. Posteriormente se comenzó con la deshidratación con acetona (50/50; 15min) hasta llegar aL 100% (30min), para luego realizar el secado por punto crítico. Las muestras fueron montadas en stubs y se les evaporó oro (300A) empleando una evaporadora de metales en plasma de argón. Las microfotografías fueron tomadas con un microscopio electrónico de barrido² (MEB) marca LEO EVO® 40 (Cambridge 2003).

En la figura 1 se observan filamentos largos y ramificados, con microconidios y macroconidios. Las figuras 2 y 3, obtenidas con mayor aumento, muestran imágenes de un microconidio esférico unido por un pequeno pedúnculo a la hifa y un macroconidio equinulado, respectivamente.

Figura 1 Hifas largas y ramificadas de H. capsulatum conmicroconidios y macroconidios. Imagen de MEB (×1.500,Bar = 10 µm).

Figura 2 Hifa tabicada y microconidio esférico de H. capsulatum. Imagen de MEB (x20.000, Bar = 2 µm).

Figura 3 Macroconidio tuberculado de H. capsulatum. Imagen de MEB (x10.000, Bar = 2 µm).

Bibliografía

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